動(dòng)物血清：將收集在血清分離管中的全血標(biāo)本放置在室溫下.5-2小時(shí)或4℃過夜，然后1000×g離心20分鐘，取上清，或?qū)⑸锨宄?20℃或-80℃但要避免反復(fù)凍融。

血漿：用EDTA或者肝素作為抗凝劑采集標(biāo)本，采集后30分鐘內(nèi)2-8℃1000×g離心15分鐘，取上清檢測，或?qū)⑸锨宸旁?20℃或-80℃但要避免反復(fù)凍融。

組織勻漿：預(yù)冷PBS(0.01M,pH=7.4)沖洗組織，去除殘留血液(均勻漿液中裂解的紅細(xì)胞會(huì)影響測量結(jié)果)，稱重后切割組織。切割組織與相應(yīng)體積PBS(一般按1:9的重量體積比，如1g組織樣品對應(yīng)9mL的PBS，可根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要適當(dāng)調(diào)整具體體積并做好記錄。PBS加入蛋白酶抑制劑入蛋白酶抑制劑)，在冰上充分研磨。為了進(jìn)一步裂解組織細(xì)胞，均勻漿可以超聲破碎或反復(fù)凍融。最后，將均勻漿液加入5萬×g離心5~10分鐘，取上清檢測，或?qū)⑸锨宸旁?20分鐘℃或-80℃但要避免反復(fù)凍融。

細(xì)胞裂解液：吸棄培養(yǎng)液PBS（0.01M，pH7.4)再次清洗細(xì)胞。用細(xì)胞刮去細(xì)胞(胰酶和胰酶不能使用)EDTA處理)，加2-5mLPBS（0.01M，pH7.4)。懸浮細(xì)胞可以省略。收集細(xì)胞懸液，4℃1000×g離心10min，棄去培養(yǎng)基，用預(yù)冷PBS潤洗3次。加入適量的預(yù)冷PBS或非變性細(xì)胞裂解液(臨用前添加蛋白酶抑制劑)重懸細(xì)胞，通常6孔板一孔的細(xì)胞量需要150-250μLPBS重懸。將樣品放入-20℃或-80℃，冷凍樣品，然后在室溫下解凍樣品，反復(fù)冷凍3次，使細(xì)胞完全分解，或超聲破碎樣品，以達(dá)到裂解的目的?！?0000×g離心10min，去除細(xì)胞碎片，取上清檢測，或?qū)⑸锨宸旁?20℃或-80℃但要避免反復(fù)凍融。

上清細(xì)胞培養(yǎng)物或其他生物標(biāo)本，請1萬×g離心20分鐘，取上清檢測，或?qū)⑸锨宸旁?20℃或-80℃但要避免反復(fù)凍融。

樣品的保存和穩(wěn)定性：

樣本在2-8℃72h，在-20℃或-80℃可儲(chǔ)存6個(gè)月以上。樣品收集后，不是一次檢測，請按一次用量分裝冷凍，避免反復(fù)冷凍。